Dziękujemy za odwiedzenie Nature.com.Używasz wersji przeglądarki z ograniczoną obsługą CSS.Aby uzyskać najlepszą jakość, zalecamy użycie zaktualizowanej przeglądarki (lub wyłączenie trybu zgodności w przeglądarce Internet Explorer).Dodatkowo, aby zapewnić bieżące wsparcie, pokazujemy witrynę bez stylów i JavaScript.
Wyświetla karuzelę z trzema slajdami jednocześnie.Użyj przycisków Poprzedni i Następny, aby przejść przez trzy slajdy jednocześnie, lub użyj przycisków suwaka na końcu, aby przejść przez trzy slajdy jednocześnie.
W pracy opracowano metodę jednoczesnego oznaczania lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego w wodzie pitnej za pomocą analizatora przepływowego.Próbki najpierw destylowano w temperaturze 145°C.Fenol w destylacie reaguje następnie z zasadowym żelazicyjankiem i 4-aminoantypiryną, tworząc czerwony kompleks, który mierzy się kolorymetrycznie przy 505 nm.Cyjanek w destylacie reaguje następnie z chloraminą T, tworząc cyjanochlorek, który następnie tworzy niebieski kompleks z kwasem pirydynokarboksylowym, co mierzy się kolorymetrycznie przy 630 nm.Anionowe środki powierzchniowo czynne reagują z zasadowym błękitem metylenowym tworząc związek, który ekstrahuje się chloroformem i przemywa kwaśnym błękitem metylenowym w celu usunięcia substancji zakłócających.Niebieskie związki w chloroformie oznaczono kolorymetrycznie przy 660 nm.W środowisku zasadowym o długości fali 660 nm amoniak reaguje z salicylanem i chlorem w kwasie dichloroizocyjanurowym, tworząc błękit indofenolowy w temperaturze 37 ° C.Przy stężeniach masowych lotnych fenoli i cyjanków w zakresie 2–100 µg/l względne odchylenia standardowe wynosiły odpowiednio 0,75–6,10% i 0,36–5,41%, a stopnie odzysku 96,2–103,6% i 96,0–102,4% .%.Współczynnik korelacji liniowej ≥ 0,9999, granice wykrywalności 1,2 µg/L i 0,9 µg/L.Względne odchylenia standardowe wynosiły 0,27–4,86% i 0,33–5,39%, a odzyski 93,7–107,0% i 94,4–101,7%.Przy stężeniu masowym anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego 10 ~ 1000 μg/l.Współczynniki korelacji liniowej wyniosły 0,9995 i 0,9999, a granice wykrywalności odpowiednio 10,7 µg/l i 7,3 µg/l.Nie stwierdzono różnic statystycznych w porównaniu z metodą standardową krajową.Metoda oszczędza czas i wysiłek, ma niższą granicę wykrywalności, większą dokładność i dokładność, mniej zanieczyszczeń i jest bardziej odpowiednia do analizy i oznaczania próbek o dużej objętości.
Lotne fenole, cyjanki, anionowe środki powierzchniowo czynne i azot amonowy1 są markerami składników organoleptycznych, fizycznych i metaloidalnych w wodzie pitnej.Związki fenolowe są podstawowymi elementami chemicznymi w wielu zastosowaniach, ale fenol i jego homologi są również toksyczne i trudne do biodegradacji.Są emitowane podczas wielu procesów przemysłowych i stały się powszechnymi substancjami zanieczyszczającymi środowisko2,3.Wysoce toksyczne substancje fenolowe mogą przedostawać się do organizmu przez skórę i narządy oddechowe.Większość z nich traci swoją toksyczność w procesie detoksykacji po przedostaniu się do organizmu człowieka, a następnie wydalona z moczem.Jednakże, gdy normalne możliwości organizmu w zakresie detoksykacji zostaną przekroczone, nadmiar składników może gromadzić się w różnych narządach i tkankach, co prowadzi do przewlekłego zatrucia, bólu głowy, wysypki, swędzenia skóry, lęku psychicznego, anemii i różnych objawów neurologicznych 4, 5, 6,7.Cyjanek jest niezwykle szkodliwy, ale szeroko rozpowszechniony w przyrodzie.Wiele produktów spożywczych i roślin zawiera cyjanek, który może być wytwarzany przez niektóre bakterie, grzyby lub glony8,9.W produktach spłukiwanych, takich jak szampony i płyny do mycia ciała, często stosuje się anionowe środki powierzchniowo czynne, aby ułatwić oczyszczanie, ponieważ zapewniają one produktom doskonałą jakość piany i piany, której oczekują konsumenci.Jednak wiele środków powierzchniowo czynnych może podrażniać skórę10,11.Woda pitna, wody gruntowe, wody powierzchniowe i ścieki zawierają azot w postaci wolnego amoniaku (NH3) i soli amonowych (NH4+), znanych jako azot amonowy (NH3-N).Produkty rozkładu materii organicznej zawierającej azot w ściekach bytowych przez mikroorganizmy pochodzą głównie ze ścieków przemysłowych, takich jak amoniak koksowniczy i syntetyczny, które wchodzą w skład azotu amonowego w wodzie12,13,14.Do pomiaru tych czterech zanieczyszczeń w wodzie można zastosować wiele metod, w tym spektrofotometrię15,16,17, chromatografię18,19,20,21 i wtrysk przepływowy15,22,23,24.Na tle innych metod najpopularniejszą metodą jest spektrofotometria1.W badaniu tym wykorzystano cztery moduły dwukanałowe do jednoczesnej oceny lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i siarczków.
Zastosowano analizator przepływu ciągłego AA500 (SEAL, Niemcy), wagę elektroniczną SL252 (Shanghai Mingqiao Electronic Instrument Factory, Chiny) i wodomierz ultraczysty Milli-Q (Merck Millipore, USA).Wszystkie chemikalia użyte w tej pracy miały czystość analityczną, a we wszystkich eksperymentach użyto wody dejonizowanej.Kwas solny, kwas siarkowy, kwas fosforowy, kwas borowy, chloroform, etanol, tetraboran sodu, kwas izonikotynowy i 4-aminoantypirynę zakupiono od Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. (Chiny).Triton X-100, wodorotlenek sodu i chlorek potasu zakupiono w Tianjin Damao Chemical Reagent Factory (Chiny).Żelazicyjanek potasu, nitroprusydek sodu, salicylan sodu i N,N-dimetyloformamid dostarczono przez Tianjin Tianli Chemical Reagent Co., Ltd. (Chiny).Diwodorofosforan potasu, wodorofosforan disodu, pirazolon i trihydrat błękitu metylenowego zakupiono od Tianjin Kemiou Chemical Reagent Co., Ltd. (Chiny).Dihydrat cytrynianu trisodu, eter polioksyetylenowo-laurylowy i dichloroizocyjanuran sodu zakupiono od Shanghai Aladdin Biochemical Technology Co., Ltd. (Chiny).Standardowe roztwory lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i wodnego azotu amonowego zakupiono w Chińskim Instytucie Metrologii.
Odczynnik do destylacji: Rozcieńczyć 160 ml kwasu fosforowego do 1000 ml wodą dejonizowaną.Bufor rezerwowy: Odważyć 9 g kwasu borowego, 5 g wodorotlenku sodu i 10 g chlorku potasu i rozcieńczyć wodą dejonizowaną do objętości 1000 ml.Odczynnik absorpcyjny (odnawiany co tydzień): Dokładnie odmierzyć 200 ml buforu podstawowego, dodać 1 ml 50% Triton X-100 (v/v, Triton X-100/etanol) i użyć po przefiltrowaniu przez membranę filtrującą 0,45 µm.Żelazicyjanek potasu (odnawiany co tydzień): Odważyć 0,15 g żelazicyjanku potasu i rozpuścić go w 200 ml buforu rezerwowego, dodać 1 ml 50% Triton X-100, przed użyciem przesączyć przez membranę filtrującą 0,45 µm.4-aminoantypiryna (odnawiana co tydzień): Odważyć 0,2 g 4-aminoantypiryny i rozpuścić w 200 ml buforu podstawowego, dodać 1 ml 50% Triton X-100, przesączyć przez membranę filtrującą 0,45 µm.
Odczynnik do destylacji: lotny fenol.Roztwór buforowy: Odważyć 3 g diwodorofosforanu potasu, 15 g wodorofosforanu disodu i 3 g dihydratu cytrynianu trisodu i rozcieńczyć wodą dejonizowaną do objętości 1000 ml.Następnie dodać 2 ml 50% Triton X-100.Chloramina T: Odważyć 0,2 g chloraminy T i rozcieńczyć wodą dejonizowaną do objętości 200 ml.Odczynnik chromogenny: Odczynnik chromogenny A: Całkowicie rozpuścić 1,5 g pirazolonu w 20 ml N,N-dimetyloformamidu.Deweloper B: Rozpuścić 3,5 g kwasu hisnikotynowego i 6 ml 5 M NaOH w 100 ml wody dejonizowanej.Przed użyciem zmieszaj wywoływacz A i wywoływacz B, dostosuj pH do 7,0 roztworem NaOH lub roztworem HCl, następnie rozcieńcz do 200 ml wodą dejonizowaną i przefiltruj do późniejszego użycia.
Roztwór buforowy: Rozpuścić 10 g tetraboranu sodu i 2 g wodorotlenku sodu w wodzie dejonizowanej i rozcieńczyć do 1000 ml.0,025% roztwór błękitu metylenowego: Rozpuścić 0,05 g trihydratu błękitu metylenowego w wodzie dejonizowanej i uzupełnić do 200 ml.Bufor podstawowy błękitu metylenowego (odnawiany codziennie): rozcieńczyć 20 ml 0,025% roztworu błękitu metylenowego do 100 ml buforem podstawowym.Przenieść do rozdzielacza, przemyć 20 ml chloroformu, zużyty chloroform wyrzucić i przemyć świeżym chloroformem aż do zniknięcia czerwonego zabarwienia warstwy chloroformu (zwykle 3 razy), następnie przesączyć.Zasadowy błękit metylenowy: Rozcieńczyć 60 ml przefiltrowanego roztworu podstawowego błękitu metylenowego do 200 ml roztworu podstawowego, dodać 20 ml etanolu, dobrze wymieszać i odgazować.Kwasowy błękit metylenowy: Dodać 2 ml 0,025% roztworu błękitu metylenowego do około 150 ml wody dejonizowanej, dodać 1,0 ml 1% H2SO4 i następnie rozcieńczyć wodą dejonizowaną do objętości 200 ml.Następnie dodać 80 ml etanolu, dobrze wymieszać i odgazować.
20% roztwór eteru polioksyetylenowo-laurylowego: Odważyć 20 g eteru polioksyetylenowo-laurylowego i rozcieńczyć wodą dejonizowaną do objętości 1000 ml.Bufor: Odważyć 20 g cytrynianu trójsodowego, rozcieńczyć wodą dejonizowaną do objętości 500 ml i dodać 1,0 ml 20% eteru polioksyetylenowo-laurylowego.Roztwór salicylanu sodu (odnawiany co tydzień): Odważyć 20 g salicylanu sodu i 0,5 g azotynu żelazicyjanku potasu i rozpuścić w 500 ml wody dejonizowanej.Roztwór dichloroizocyjanuranu sodu (odnawiany co tydzień): Odważyć 10 g wodorotlenku sodu i 1,5 g dichloroizocyjanuranu sodu i rozpuścić je w 500 ml wody dejonizowanej.
Lotne wzorce fenolu i cyjanku przygotowane w postaci roztworów o stężeniu 0 µg/l, 2 µg/l, 5 µg/l, 10 µg/l, 25 µg/l, 50 µg/l, 75 µg/l i 100 µg/l, przy użyciu 0,01 M roztwór wodorotlenku sodu.Anionowy środek powierzchniowo czynny i standard azotu amonowego przygotowano przy użyciu wody dejonizowanej 0 µg/L, 10 µg/L, 50 µg/L, 100 µg/L, 250 µg/L, 500 µg/L, 750 µg/L i 1000 mcg/l .rozwiązanie.
Uruchom zbiornik cyklu chłodzenia, następnie (w kolejności) włącz komputer, próbnik i zasilanie hosta AA500, sprawdź, czy orurowanie jest prawidłowo podłączone, włóż wąż powietrza do zaworu powietrza, zamknij płytkę dociskową pompy perystaltycznej, włóż rurkę odczynnika do czystej wody pośrodku.Uruchom program, aktywuj odpowiednie okno kanału i sprawdź, czy rury łączące są dobrze podłączone oraz czy nie ma szczelin lub nieszczelności.Jeśli nie ma wycieku, zaaspirować odpowiedni odczynnik.Gdy linia bazowa okna kanału stanie się stabilna, wybierz i uruchom określony plik metody w celu wykrycia i analizy.Warunki przyrządu przedstawiono w tabeli 1.
W tej zautomatyzowanej metodzie oznaczania fenolu i cyjanku próbki są najpierw destylowane w temperaturze 145 °C.Fenol w destylacie reaguje następnie z zasadowym żelazicyjankiem i 4-aminoantypiryną, tworząc czerwony kompleks, który mierzy się kolorymetrycznie przy 505 nm.Cyjanek w destylacie reaguje następnie z chloraminą T, tworząc cyjanochlorek, który tworzy niebieski kompleks z kwasem pirydynokarboksylowym, mierzony kolorymetrycznie przy 630 nm.Anionowe środki powierzchniowo czynne reagują z zasadowym błękitem metylenowym, tworząc związki, które ekstrahuje się chloroformem i rozdziela w separatorze faz.Następnie fazę chloroformową przemyto kwaśnym błękitem metylenowym w celu usunięcia substancji zakłócających i ponownie rozdzielono w drugim rozdzielaczu faz.Kolorymetryczne oznaczanie związków niebieskich w chloroformie przy 660 nm.W oparciu o reakcję Berthelota amoniak reaguje z salicylanem i chlorem w kwasie dichloroizocyjanurowym w środowisku alkalicznym w temperaturze 37 ° C, tworząc błękit indofenolowy.Jako katalizator w reakcji zastosowano nitroprusydek sodu, a uzyskaną barwę mierzono przy 660 nm.Zasadę tej metody pokazano na rysunku 1.
Schematyczny diagram metody ciągłego pobierania próbek do oznaczania lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego.
Stężenie lotnych fenoli i cyjanków wahało się od 2 do 100 µg/l, współczynnik korelacji liniowej 1,000, równanie regresji y = (3,888331E + 005)x + (9,938599E + 003).Współczynnik korelacji dla cyjanku wynosi 1,000, a równanie regresji to y = (3,551656E + 005)x + (9,951319E + 003).Anionowy środek powierzchniowo czynny wykazuje dobrą liniową zależność od stężenia azotu amonowego w zakresie 10-1000 µg/L.Współczynniki korelacji dla anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego wyniosły odpowiednio 0,9995 i 0,9999.Równania regresji: odpowiednio y = (2,181170E + 004)x + (1,144847E + 004) i y = (2,375085E + 004)x + (9,631056E + 003).Próbkę kontrolną mierzono w sposób ciągły 11 razy, a granicę wykrywalności metody podzielono przez 3 odchylenia standardowe próbki kontrolnej na nachylenie krzywej standardowej.Granice wykrywalności lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego wynosiły odpowiednio 1,2 µg/l, 0,9 µg/l, 10,7 µg/l i 7,3 µg/l.Granica wykrywalności jest niższa niż metoda zgodna z normą krajową, szczegółowe informacje można znaleźć w tabeli 2.
Do próbek wody niezawierających śladów analitów należy dodawać roztwory o wysokim, średnim i niskim standardzie.Odzysk i dokładność śróddzienną i śróddzienną obliczono po siedmiu kolejnych pomiarach.Jak pokazano w Tabeli 3, ekstrakcja lotnego fenolu w ciągu dnia i w ciągu dnia wyniosła odpowiednio 98,0–103,6% i 96,2–102,0%, przy względnych odchyleniach standardowych wynoszących 0,75–2,80% i 1,27–6,10%.Uzysk cyjanku w ciągu dnia i w ciągu dnia wynosił odpowiednio 101,0-102,0% i 96,0-102,4%, a względne odchylenie standardowe odpowiednio 0,36-2,26% i 2,36-5,41%.Ponadto śróddzienne i śróddniowe ekstrakcje anionowych środków powierzchniowo czynnych wyniosły odpowiednio 94,3–107,0% i 93,7–101,6%, przy względnych odchyleniach standardowych 0,27–0,96% i 4,44–4,86%.Ostatecznie śród- i śróddniowy odzysk azotu amonowego wyniósł odpowiednio 98,0–101,7% i 94,4–97,8%, przy względnych odchyleniach standardowych odpowiednio 0,33–3,13% i 4,45–5,39%.jak pokazano w tabeli 3.
Do pomiaru czterech substancji zanieczyszczających wodę można zastosować szereg metod badawczych, w tym spektrofotometrię15,16,17 i chromatografię25,26.Spektrofotometria chemiczna to nowo badana metoda wykrywania tych substancji zanieczyszczających, wymagana przez normy krajowe 27, 28, 29, 30, 31. Wymaga takich etapów, jak destylacja i ekstrakcja, co skutkuje długim procesem o niewystarczającej czułości i dokładności.Dobra, zła dokładność.Powszechne stosowanie organicznych substancji chemicznych może stanowić zagrożenie dla zdrowia eksperymentatorów.Chociaż chromatografia jest szybka, prosta, wydajna i ma niskie granice wykrywalności, nie jest w stanie wykryć czterech związków jednocześnie.Jednakże nierównowagowe warunki dynamiczne wykorzystuje się w analizie chemicznej z wykorzystaniem spektrofotometrii przepływu ciągłego, która opiera się na ciągłym przepływie gazu w przedziale przepływu roztworu próbki, dodawaniu odczynników w odpowiednich proporcjach i kolejności podczas kończenia reakcji przez pętlę mieszającą i wykrycie go w spektrofotometrze, uprzednio usuwając pęcherzyki powietrza.Ponieważ proces wykrywania jest zautomatyzowany, próbki są destylowane i pobierane online, w stosunkowo zamkniętym środowisku.Metoda znacząco poprawia efektywność pracy, dodatkowo skraca czas detekcji, upraszcza operacje, zmniejsza zanieczyszczenie odczynników, zwiększa czułość i granicę wykrywalności metody.
Anionowy środek powierzchniowo czynny i azot amonowy dodano do połączonego produktu testowego w stężeniu 250 µg/l.Użyj substancji wzorcowej do przekształcenia lotnego fenolu i cyjanku w substancję badaną w stężeniu 10 µg/l.Do analizy i detekcji wykorzystano metodę standardu krajowego oraz tę metodę (6 równoległych eksperymentów).Wyniki obu metod porównano za pomocą niezależnego testu t.Jak pokazano w Tabeli 4, nie było istotnej różnicy pomiędzy obiema metodami (P > 0,05).
W badaniu wykorzystano analizator przepływu ciągłego do jednoczesnej analizy i wykrywania lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego.Wyniki badań pokazują, że objętość próbki wykorzystywana przez analizator przepływu ciągłego jest mniejsza niż w przypadku standardowej metody krajowej.Ma także niższe granice wykrywalności, zużywa o 80% mniej odczynników, wymaga krótszego czasu przetwarzania poszczególnych próbek i wykorzystuje znacznie mniej rakotwórczego chloroformu.Przetwarzanie online jest zintegrowane i zautomatyzowane.Ciągły przepływ automatycznie zasysa odczynniki i próbki, następnie miesza w obwodzie mieszającym, automatycznie podgrzewa, ekstrahuje i zlicza za pomocą kolorymetrii.Proces eksperymentalny prowadzony jest w układzie zamkniętym, co przyspiesza czas analizy, zmniejsza zanieczyszczenie środowiska i pomaga zapewnić bezpieczeństwo eksperymentatorów.Skomplikowane etapy operacji, takie jak ręczna destylacja i ekstrakcja, nie są potrzebne22,32.Jednakże orurowanie przyrządów i akcesoria są stosunkowo złożone, a na wyniki testów wpływa wiele czynników, które mogą łatwo spowodować niestabilność systemu.Istnieje kilka ważnych kroków, które możesz podjąć, aby poprawić dokładność wyników i zapobiec zakłóceniom w eksperymencie.(1) Przy oznaczaniu lotnych fenoli i cyjanków należy uwzględnić wartość pH roztworu.Zanim ciecz trafi do cewki destylacyjnej, pH musi wynosić około 2.Przy pH > 3 można również oddestylować aminy aromatyczne, a reakcja z 4-aminoantypiryną może dawać błędy.Również przy pH > 2,5 odzysk K3[Fe(CN)6] będzie mniejszy niż 90%.Próbki o zawartości soli większej niż 10 g/l mogą zatkać wężownicę destylacyjną i spowodować problemy.W takim przypadku należy dodać świeżą wodę, aby zmniejszyć zawartość soli w próbce33.(2) Następujące czynniki mogą mieć wpływ na identyfikację anionowych środków powierzchniowo czynnych: Kationowe środki chemiczne mogą tworzyć silne pary jonowe z anionowymi środkami powierzchniowo czynnymi.Wyniki mogą być również obarczone błędem w obecności: stężeń kwasu huminowego większych niż 20 mg/l;związki o dużej aktywności powierzchniowej (np. inne środki powierzchniowo czynne) > 50 mg/l;substancje o silnych właściwościach redukujących (SO32-, S2O32- i OCl-);substancje tworzące kolorowe cząsteczki, rozpuszczalne w chloroformie z dowolnym odczynnikiem;niektóre aniony nieorganiczne (chlorki, bromki i azotany) w ściekach34,35.(3) Przy obliczaniu azotu amonowego należy wziąć pod uwagę aminy drobnocząsteczkowe, ponieważ ich reakcje z amoniakiem są podobne, a wynik będzie wyższy.Zakłócenia mogą wystąpić, jeśli po dodaniu wszystkich roztworów odczynników pH mieszaniny reakcyjnej spadnie poniżej 12,6.Zwykle powodują to próbki silnie kwaśne i buforowane.Jony metali wytrącające się w postaci wodorotlenków w wysokich stężeniach mogą również prowadzić do słabej odtwarzalności36,37.
Wyniki wykazały, że metoda analizy ciągłego przepływu do jednoczesnego oznaczania lotnych fenoli, cyjanków, anionowych środków powierzchniowo czynnych i azotu amonowego w wodzie pitnej charakteryzuje się dobrą liniowością, niską granicą wykrywalności, dobrą dokładnością i odzyskiem.Nie ma znaczącej różnicy w stosunku do standardowej metody krajowej.Metoda ta zapewnia szybką, czułą, dokładną i łatwą w użyciu metodę analizy i oznaczania dużej liczby próbek wody.Jest szczególnie odpowiedni do wykrywania czterech składników jednocześnie, a skuteczność wykrywania jest znacznie poprawiona.
SASAK.Standardowa metoda badania wody pitnej (GB/T 5750-2006).Pekin, Chiny: Chińskie Ministerstwo Zdrowia i Rolnictwa/Chińska Administracja Standardów (2006).
Babich H. i in.Fenol: przegląd zagrożeń dla środowiska i zdrowia.Zwykły.I. Farmakodynamika.1, 90–109 (1981).
Akhbarizadeh, R. i in.Nowe zanieczyszczenia w wodzie butelkowanej na świecie: przegląd najnowszych publikacji naukowych.J. Niebezpieczny.Alma Mater.392, 122–271 (2020).
Bruce, W. i in.Fenol: charakterystyka zagrożeń i analiza reakcji narażenia.J. Środowisko.nauka.Zdrowie, Część C – Środowisko.czynnik rakotwórczy.Ekotoksykologia.wyd.19, 305–324 (2001).
Millera, JPV i in.Przegląd potencjalnych zagrożeń dla środowiska i zdrowia ludzkiego oraz ryzyka długotrwałego narażenia na p-tert-oktylofenol.parsknięcie.ekologia.ocena ryzyka.Dziennik wewnętrzny 11, 315–351 (2005).
Ferreira, A. i in.Wpływ ekspozycji na fenol i hydrochinon na migrację leukocytów do płuc w przypadku alergicznego zapalenia.I. Wright.164 (Załącznik-S), S106-S106 (2006).
Adeyemi, O. i in.Ocena toksykologiczna wpływu wody zanieczyszczonej ołowiem, fenolem i benzenem na wątrobę, nerki i okrężnicę szczurów albinosów.Chemia gastronomiczna.I. 47, 885–887 (2009).
Luque-Almagro, VM i in.Badanie środowiska beztlenowego pod kątem mikrobiologicznej degradacji cyjanku i pochodnych cyjanku.Zapisz się na mikrobiologię.Biotechnologia.102, 1067–1074 (2018).
Manoy, KM i in.Ostra toksyczność cyjanku w oddychaniu tlenowym: teoretyczne i eksperymentalne wsparcie interpretacji Merburna.Biocząsteczki.Koncepcje 11, 32–56 (2020).
Anantapadmanabhan, KP Oczyszczanie bez kompromisów: wpływ środków czyszczących na barierę ochronną skóry i delikatne techniki oczyszczania.dermatologia.Tam.17, 16–25 (2004).
Morris, SAW i in.Mechanizmy przenikania anionowych środków powierzchniowo czynnych do skóry ludzkiej: Zgłębienie teorii penetracji agregatów monomerycznych, micelarnych i submicelarnych.wewnętrzne J. Kosmetyki.nauka.41, 55–66 (2019).
Norma amerykańskiej Agencji Ochrony Środowiska (EPA), amerykańska EPA dotycząca jakości wody słodkiej z amoniakiem (EPA-822-R-13-001).Agencja Ochrony Środowiska Stanów Zjednoczonych, Administracja Zasobów Wodnych, Waszyngton, DC (2013).
Constable, M. i in.Ocena zagrożenia ekologicznego amoniaku w środowisku wodnym.parsknięcie.ekologia.ocena ryzyka.Dziennik wewnętrzny 9, 527–548 (2003).
Wang H. i in.Normy jakości wody dla całkowitego azotu amonowego (TAN) i amoniaku niezjonizowanego (NH3-N) oraz związane z nimi zagrożenia dla środowiska w rzece Liaohe w Chinach.Chemosfera 243, 125–328 (2020).
Hassan, CSM i in.Nowa metoda spektrofotometryczna oznaczania cyjanku w ściekach galwanicznych metodą wtrysku z przepływem przerywanym Taranta 71, 1088–1095 (2007).
Tak, K. i in.Lotne fenole oznaczono spektrofotometrycznie, stosując nadsiarczan potasu jako środek utleniający i 4-aminoantypirynę.szczęka.J.Norg.odbyt.Chemiczny.11, 26–30 (2021).
Wu, H.-L.Czekać.Szybka detekcja widma azotu amonowego w wodzie za pomocą spektrometrii dwufalowej.zakres.odbyt.36, 1396–1399 (2016).
Lebedev AT i in.Wykrywanie związków półlotnych w mętnej wodzie metodą GC×GC-TOF-MS.Dowody na to, że fenole i ftalany są priorytetowymi substancjami zanieczyszczającymi.Środa.zanieczyszczać.241, 616–625 (2018).
Tak, Yu.-Zh.Czekać.Do wykrycia 7 rodzajów lotnych związków siarki na powierzchni plastikowego toru wykorzystano metodę ekstrakcji ultradźwiękowej – HS-SPEM/GC-MS.J. Narzędzia.odbyt.41, 271–275 (2022).
Kuo, Connecticut i in.Fluorometryczne oznaczanie jonów amonowych metodą chromatografii jonowej z pokolumnową derywatyzacją aldehydu ftalowego.J. Chromatografia.A 1085, 91–97 (2005).
Villar, M. i in.Nowatorska metoda szybkiego oznaczania całkowitego LAS w osadach ściekowych przy użyciu wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC) i elektroforezy kapilarnej (CE).odbyt.Chim.Acta 634, 267–271 (2009).
Zhang, W.-H.Czekać.Analiza przepływowo-wstrzykowa lotnych fenoli w próbkach wody środowiskowej z wykorzystaniem nanokryształów CdTe/ZnSe jako sond fluorescencyjnych.odbyt.Anal stworzenia.Chemiczny.402, 895–901 (2011).
Sato, R. i in.Opracowanie detektora optodowego do oznaczania anionowych środków powierzchniowo czynnych metodą analizy przepływowo-wstrzykowej.odbyt.nauka.36, 379–383 (2020).
Wang, D.-H.Analizator przepływu do jednoczesnego oznaczania anionowych syntetycznych detergentów, lotnych fenoli, cyjanku i azotu amonowego w wodzie pitnej.szczęka.J. Laboratorium Zdrowia.technologie.31, 927–930 (2021).
Moghaddam, MRA i in.Organiczna, bezrozpuszczalnikowa ekstrakcja ciecz-ciecz w wysokiej temperaturze połączona z nowatorską, przełączalną głęboko eutektyczną, dyspersyjną mikroekstrakcją ciecz-ciecz trzech przeciwutleniaczy fenolowych w próbkach ropy naftowej.mikrochemia.Dziennik 168, 106433 (2021).
Farajzade, MA i in.Badania eksperymentalne i teoria funkcjonału gęstości nowej ekstrakcji w fazie stałej związków fenolowych z próbek ścieków przed oznaczeniem GC-MS.mikrochemia.Dziennik 177, 107291 (2022).
Jean, S. Jednoczesne oznaczanie lotnych fenoli i anionowych syntetycznych detergentów w wodzie pitnej metodą analizy przepływu ciągłego.szczęka.J. Laboratorium Zdrowia.technologie.21, 2769–2770 (2017).
Xu, Yu.Analiza przepływowa lotnych fenoli, cyjanków i anionowych syntetycznych detergentów w wodzie.szczęka.J. Laboratorium Zdrowia.technologie.20, 437–439 (2014).
Liu, J. i in.Przegląd metod analizy lotnych fenoli w próbkach środowiska lądowego.J. Narzędzia.odbyt.34, 367–374 (2015).
Alakhmad, V. i in.Opracowanie układu przepływowego składającego się z parownika bezmembranowego i przepływowego bezkontaktowego detektora przewodności do oznaczania zawartości amoniaku i siarczków rozpuszczonych w wodzie ściekowej.Taranta 177, 34–40 (2018).
Troyanovich M. i in.Techniki wtrysku przepływowego w analizie wody stanowią najnowszy postęp.Molekuły 27, 1410 (2022).
Czas publikacji: 22 lutego 2023 r